Dr hab. inż. Iwona Żur
Publikacje
-
- Malaga S.
- Janeczko A.
- Janowiak F.
- Waligórski P.
- Oklestkova J.
- Dubas E.
- Krzewska M.
- Nowicka A.
- Surówka E.
- Rapacz M.
- Wójcik-Jagła M.
- Kopeć P.
- Hura T.
- Ostrowska A.
- Kaczanowska K.
- Żur I.
- Involvement of homocastasterone, salicylic and abscisic acids in the regulation of drought and freezing tolerance in doubled haploid lines of winter barley.
- 2020.
- Plant Growth Regulation 90: 173–188.
-
- Nowicka A.
- Juzoń K.
- Krzewska M.
- Dziurka M.
- Dubas E.
- Kopeć P.
- Zieliński K.
- Żur I.
- Chemically-induced DNA de-methylation alters the effectiveness of microspore embryogenesis in triticale.
- 2019.
- Plant Science 287: 110189.
-
- Żur I.
- Dubas E.
- Krzewska M.
- Zieliński K.
- Fodor J
- Janowiak F.
- Glutathione provides antioxidative defence and promotes microsporederived embryo development in isolated microspore cultures of triticale (×Triticosecale Wittm.).
- 2019.
- Plant Cell Reports 38: 195–209.
-
- Hura K.
- Hura T.
- Żur I.
- Płażek A.
- Rapacz M.
- Different response of winter oilseed rape calli and seedlings to Leptosphaeria maculans.
- 2018.
- Phyton, 57: 59-68.
-
- Gołębiowska-Pikania G.
- Kopeć P.
- Surówka E.
- Janowiak F.
- Krzewska M.
- Dubas E.
- Nowicka A.
- Kasprzyk J.
- Ostrowska A.
- Malaga S.
- Hura T.
- Żur I.
- Changes in protein abundance and activity induced by drought during generative development of winter barley (Hordeum vulgare L.).
- 2017.
- Journal of Proteomics 169: 73-86.
Projekty
-
Tango2/340285/NCBR/2017,
Opracowanie efektywnego sposobu wytwarzania podwojonych haploidów metodą androgenezy dla polskich materiałów hodowlanych pszenicy (Triticum aesitivum L.) -
2015/18/M/NZ3/00348,
Rola stresu oksydacyjnego w regulacji embriogenezy w kulturach izolowanych mikrospor pszenżyta (x Triticosecale Wittm.) i jęczmienia (Hordeum vulgare L.) -
MRiRW, nr 84,
Identyfikacja czynników determinujących efektywność otrzymywania podwojonych haploidów żyta (Secale cereale L.) metodami androgenezy i krzyżowań oddalonych
WYKSZTAŁCENIE I STOPNIE NAUKOWE
1985–1989 Studia na Wydziale Rolniczym, Akademii Rolniczej (obecnie Uniwersytet Rolniczy) im. Hugona Kołłątaja w Krakowie (WR UR)
1989 magister inżynier nauk rolniczych, WR UR
1997 doktor nauk rolniczych w zakresie agronomii-fizjologii roślin, WR UR
2008 doktor habilitowany nauk rolniczych w zakresie agronomii-fizjologii roślin, Wydział Rolniczo-Ekonomiczny UR
DOŚWIADCZENIE ZAWODOWE
1989-1990 specjalista w Przedsiębiorstwie Państwowym Hodowla Buraka Pastewnego (obecnie Małopolska Hodowla Roślin HBP Sp z o.o.)
1990-1997 asystent i starszy asystent naukowo-badawczy w Zakładzie (obecnie Instytut) Fizjologii Roślin PAN w Krakowie (IFR PAN)
1998-2010 adiunkt w IFR PAN
2010 docent w IFR PAN
od 2010 profesor nadzwyczajny IRF PAN
od 2019 profesor instytutu IFR PAN
PEŁNIONE FUNKCJE
Członek Rady Naukowej IFR PAN od 2008
2008-2014 Sekretarz Rady Naukowej IFR PAN
Kierownik Zakładu Biologii Komórki od 2010
od 2015 przedstawiciel IFR PAN w Studium Doktoranckim Nauk Przyrodniczych PAN w Krakowie
od 2019 przedstawiciel IFR PAN w Szkole Doktorskiej Nauk Przyrodniczych i Rolniczych PAN w Krakowie
TEMATYKA BADAWCZA
Techniki in vitro: kultury tkankowe, zawiesinowe i protoplastów, oraz ich zastosowanie w badaniach nad embriogenezą somatyczną, organogenezą oraz reakcjami obronnymi uruchamianymi w odpowiedzi na stres biotyczny i abiotyczny
Badanie stopnia samoniezgodności i zmienności tej cechy pod wpływem czynników środowiskowych u roślin kapustnych (Brassica oleracea L var capitata) oraz możliwości i metody jej przełamywania
Metody wyprowadzania podwojonych haploidów u roślin zbożowych, traw i rzepaku oraz ich zastosowanie w badaniach podstawowych i w praktyce hodowlanej
Identyfikacja genetycznych i fizjologicznych czynników determinujących proces androgenezy
Molekularne i fizjologiczne podłoże odporności roślin na patogeny grzybowe
STOSOWANE METODY
kultury in vitro: tkankowe, zawiesinowe oraz kultury protoplastów
metody indukowania androgenezy i produkcji podwojonych haploidów: kultury pylnikowe na pożywkach stałych i płynnych, kultury izolowanych mikrospor
metody analityczne: kalorymetria, spektrofotometria, respirometria, mikroskopia świetlna i fluorescencyjna
